Merisigade arstlik läbivaatus

Merisead on rahumeelsed loomad, kelle suhtes ei ole vaja sundi kasutada. Kui nad aga vajavad näiteks arstiabi, siis nad ehmuvad, üritades põgeneda. Sel juhul on soovitatav loomi pidada. Kuigi mõnikord piisab villa võtmisest kuklasse, mis piirab liikumisvabadust.

Teatud oskustega saavad merisead vena cephalica verd võtta. Selleks peatada verevool üle küünarnuki kummisidemega ja sirutada looma jäse. Vajadusel saate juukseid kääridega lõigata. Pärast alkoholiga immutatud tampooniga desinfitseerimist sisestage ettevaatlikult N16 nõel. Veri eemaldatakse otse nõela koonusest. Kui määrimiseks on vaja ainult ühte tilka, siis pärast veenipunktsiooni saab selle otse nahalt eemaldada. 

Teine võimalus vere võtmiseks on silmaorbiidi venoosse põimiku punktsioon. Pärast silma tuimastamist mõne tilga Ophtocainiga keerake silmamuna nimetissõrmega väljapoole. Seejärel sisestage silmamuna all olev hematokriti mikrotuubul ettevaatlikult orbiidi venoossesse põimikusse. Kui toru jõuab orbitaalpõimiku taha, rebenevad veresooned kergesti ja täidavad kapillaartoru verega. Pärast vere võtmist piisab, kui vajutada 1-2 minutit kergelt suletud silmalaule, et verejooks peatada. See meetod nõuab veterinaararsti oskusi ja patsiendi rahulikku seisundit.

Merisea põit uurides pigistatakse see õrnalt välja. Loomad eritavad aga uriini, kui nad asetatakse kortsunud kilekotiga kaetud allapanule. Reeglina kogutakse uuringuks piisav kogus tunni jooksul.

Meestel ei ole soovitatav kateetrit sisestada, kuna see võib kergesti kahjustada ureetrat. Merisigade uriin on aluseline ja sisaldab kaltsiumkarbonaadi ja kolmikfosfaadi kristalle. Sademe saadakse hematokriti mikrotsentrifuugis.

Pesakonna põhjalik uurimine on vajalik, kui majja tuuakse uus merisiga või suurtes loomarühmades, kus kõikumine toimub sageli. Üksiku looma pidamisel on uuringud vajalikud vaid harvadel juhtudel. 

Endoparasiidid mängivad kodumerisigadel vaid väikest rolli. Nematoodide esinemise kindlakstegemiseks kasutatakse naatriumkloriidi küllastunud lahust (erikaal 1,2). 100 ml plasttopsis segage hästi 2 g allapanu ja veidi küllastunud naatriumkloriidi lahust. Pärast seda täidetakse klaas ääreni lauasoola lahusega, sisu segatakse põhjalikult, nii et allapanu osakesed jaotuksid lahuses ühtlaselt.

5 minuti pärast asetage lahuse pinnale ettevaatlikult katteklaas. Usside ujuvad munandid settivad sellele. Umbes ühe tunni pärast saab katteklaasi pintsettide abil lahuselt ettevaatlikult eemaldada. Munandid on mikroskoobi all selgelt nähtavad 10-40-kordse suurendusega. Parasitoloogilisel uuringul segatakse kraanivees settimistehnoloogial 100 g allapanu 5 ml plasttopsis kraanivees nii, et saadakse homogeenne suspensioon, mis filtreeritakse läbi kurna.

Filtraadile lisatakse paar tilka nõudepesuvahendit, lastakse tund aega seista, seejärel valatakse pealt ülemine vedelikukiht maha ning täidetakse uuesti vee ja pesuainega. Veel tunni pärast tühjendatakse vesi uuesti ja muda segatakse klaaspulgaga korralikult läbi. Mõni tilk muda asetatakse slaidile, millele on lisatud tilk metüleensinise värvaine 10% lahust. Preparaati uuritakse mikroskoobi all XNUMXx suurendusega ilma katteklaasita. Metüleensinine muudab mustuseosakesed ja taimed sinakasmustaks ning munandid kollakaspruuniks.

Merisigu mõjutavad sageli lestad, mille olemasolu on lihtne tuvastada. Selleks kraapige skalpelliga väikest nahapinda, kuni veri välja tuleb. Saadud nahaosakesed asetatakse slaidile, segatakse 10% kaaliumilahusega ja uuritakse mikroskoobi all kümnekordse suurendusega kaks tundi hiljem. Teine võimalus puukide diagnoosimiseks on musta paberi test, mis on aga vajalik ainult raskete kahjustuste korral. 

Patsient surmatakse ja asetatakse mustale paberile. Mõne aja pärast liiguvad lestad nahalt karvkattesse, kus neid on tugeva luubiga või mikroskoobiga hästi näha. Mõnikord võib neid leida kõige mustema paberi pealt. Täid ja täid on palja silmaga nähtavad. Kuid praktikutel ei soovitata seda meetodit kasutada. 

Teine levinud probleem on seenhaigused. Võetud naha- ja karvkatte proovid tuleb saata diagnoosimiseks mükoloogialaborisse.

Ekspositsiooni pikkus ja tugevus merisigade röntgenuuringul sõltub kasutatavast kassetist ning kokkupuute ja arengu tüübist. Häid tulemusi saab saavutada kokkupuutega, mida kasutatakse väikeste kasside röntgenuuringus.